1. 去除(chu)色譜(pu)柱內(nei)的緩沖液，鹽，酸的方法(fa)：使用不(bu)含緩沖液，鹽，酸的流(liu)動相沖洗10-15分鐘。
   例(li)：流動相為(wei)甲(jia)醇/磷酸(suan)緩(huan)沖液（20mmol/L） =50/50時(shi)，就使用(yong)甲(jia)醇/水(shui) =50/50沖洗

2. 沖洗色譜柱內附著物的方(fang)法，基線不穩時(shi)的解決(jue)方(fang)法

• 樣(yang)本不是蛋白(bai)質時(shi)，使用甲醇或四氫呋(fu)喃(nan)沖(chong)洗。

• 樣品是蛋白質時，使用含0.1% C2HF3O2的50-70%的乙腈/水沖洗

1. 短期（數日(ri)）保存：
   使用不含緩沖(chong)液，鹽，酸的流動相沖(chong)洗(xi)10-15分鐘(zhong)。保存。
   例：流動相為(wei)甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 長期（1個月(yue)以上）保(bao)存：
   使用(yong)(yong)后(hou)，先用(yong)(yong)不含酸和鹽的(de)流動(dong)相(xiang)清洗色譜(pu)柱，再將(jiang)流動(dong)相(xiang)置換為乙腈/水(shui)=70/30或 甲醇/水(shui)=70/30，保存。

除堿溶液和強酸溶液（pH1.5以下(xia)）以外(wai)都可以使用。（強(qiang)堿溶液(ye)會使(shi)硅膠(jiao)溶化(hua)，強(qiang)酸溶液(ye)會使(shi)固定相脫落）
注(zhu)意點：
溶劑粘度過高會導(dao)致壓力上升，請將壓力控制在20Mpa以下。使用(yong)酸性流動相或凝(ning)固點高的溶劑后，必須清(qing)洗色(se)譜(pu)柱。

• 一(yi)般情況下緩(huan)沖液濃度為0.005~0.02 mol/L即可。

• 流動相(xiang)在使(shi)用前一定要通過0.5μm以下的濾膜(mo)過濾。

• 蛋白質反相模式分(fen)析時(shi)，請使用大孔徑(jing)色譜柱（孔隙直徑(jing)300?) COSMOSIL Protein - R（粒徑5μm）。